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游離膽固醇含量測定試劑盒說明書

2019年07月31日 10:04:53人氣:1175來源:南京信帆生物技術(shù)有限公司

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關(guān) 鍵 詞游離膽固醇含量測定試劑盒說明書
【資料簡介】


50 管/48 樣
擇 注意:正式測定之前選擇 2-3 個預(yù)期差異大的樣本做預(yù)測定。
測定意義:
FC 是構(gòu)成細胞膜的主要成分,也是合成腎上腺皮質(zhì)激素、性激素、膽汁酸及維生素 D 等生
理活性物質(zhì)的重要原料。FC 濃度可作為脂代謝的指標。
測定原理:
FC 氧化酶催化 FC 生成△4-膽甾烯酮和 H 2 O 2 ,過氧化物酶催化 H 2 O 2 、4-氨基安替比林和酚
生成紅色醌類化合物,在 500nm 有吸收峰,其顏色深淺與 FC 含量成正比。
自備儀器和用品:
可見分光光度計、水浴鍋、可調(diào)式移液槍、1mL 玻璃比色皿、異丙醇和蒸餾水。
試劑組成和配制:
試劑一:異丙醇 50mL(自備);
工作液:液體 50mL×1 瓶,4℃保存;
標準品:液體 1mL×1 支,濃度為 0.5 μ mol/mL,4℃保存。
FC 的提。
1. 組織:按照組織質(zhì)量(g):試劑一體積(mL)為 1:5~10 的比例(建議稱取約 0.1g 組織,
加入 1mL 試劑一)進行冰浴勻漿。8000g,4℃離心 10min,取上清置冰上待測。
2. 細菌、真菌:按照細胞數(shù)量(10 4 個):試劑一體積(mL)為 500~1000:1 的比例(建
議 500 萬細胞加入 1mL 試劑一),冰浴超聲波破碎細胞(功率 300w,超聲 2 秒,間隔 3
秒,總時間 3min);然后 8000g,4℃,離心 10min,取上清置于冰上待測。
3.血清(漿)樣品:直接測定。
測定操作:
1. 分光光度計預(yù)熱 30 min,調(diào)節(jié)波長到 500 nm,蒸餾水調(diào)零。
2. FC 工作液在 40℃水浴中預(yù)熱 30min。
3. 標準管:依次在 1mL 玻璃比色皿中加入 250μL FC 標準液和 750μL FC 工作液,混勻,靜
置 24h 后于 500nm 測定 A 標準管。
4. 測定管:依次在 1mL 玻璃比色皿中加入 250μL FC 待測液和 750μL FC 工作液,混勻,靜
置 24h 后于 500nm 測定 A 測定管。
注意:標準管只需測定一次。
計算公式:
1. 血清(漿)中 FC 含量計算:
FC 含量(μmol /dL)= C 標準液×A 測定管÷A 標準管×100mL
=50×A 測定管÷A 標準管
C 標準液:0.5μmol/mL;100 mL:1dL=100 mL。
2. 組織中 FC 含量計算:
(1)按樣本蛋白濃度計算
FC 含量(μmol / mg prot)= C 標準液×A 測定管÷A 標準管÷Cpr
= 0.5×A 測定管÷A 標準管÷Cpr
(2)按樣本鮮重計算
FC 含量(μmol / g 鮮重)= C 標準液×A 測定管÷A 標準管÷W
= 0.5×A 測定管÷A 標準管÷W
C 標準液:0.5μmol/mL;Cpr:樣本蛋白濃度,mg/mL;W:樣本質(zhì)量,g/mL
3. 細胞、細菌中 FC 含量計算:
FC 含量(μmol /10 4 cell)= C 標準液×A 測定管÷A 標準管÷細菌或細胞(10 4 cell /L)
=0.5×A 測定管÷A 標準管÷細菌或細胞(10 4 cell /L)
C 標準液:0.5μmol/mL。
 

南京信帆生物技術(shù)有限公司作者

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