實(shí)驗(yàn)研究中，經(jīng)常要采集實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的血液進(jìn)行常規(guī)質(zhì)量檢測(cè)、細(xì)胞學(xué)實(shí)驗(yàn)或進(jìn)行生物化學(xué)分析，故必須掌握正確的采集血液的技術(shù)。采血方法的選擇，主要決定于實(shí)驗(yàn)的目的和所需血量以及動(dòng)物種類。

(一)剪尾采血：需血量很少時(shí)常用本法，如作紅、白細(xì)胞計(jì)數(shù)、血紅蛋白測(cè)定、制作血涂片等可與此法。動(dòng)物麻醉后，將尾尖剪去約5mm，從尾部向尾尖部按*，血即從斷端流出。也可用刀割破尾動(dòng)脈或尾靜脈，讓血液自行流出。如不麻醉，采血量較小。采血結(jié)束后，消毒、止血。用此法每只鼠可采血10余次。小鼠可每次采血約0.1ml，大鼠約0.4ml。

(二)眼眶后靜脈叢采血：穿刺采用一根特制的長(zhǎng)7～10cm硬的玻璃取血管,其一端內(nèi)徑為1 ～1.5mm，另一端逐漸擴(kuò)大，細(xì)端長(zhǎng)約1cm即可，將取血管浸入1％肝素溶液，干燥后使用。采血時(shí)，左手拇指及食指抓住鼠兩耳之間的皮膚使鼠固定，并輕輕壓迫頸部?jī)蓚?cè)，阻礙靜脈回流，使眼球充分外突，提示眼眶后靜脈叢沖血。右手持取血管，將其插入內(nèi)眼角與眼球之間，輕輕向眼底方向刺入，當(dāng)感到有阻力時(shí)即停止刺入，旋轉(zhuǎn)取血管以切開靜脈叢，血液即流入取血管中。采血結(jié)束后，拔出取血管，放松左手，出血即停止。用本法在短期內(nèi)可重復(fù)采血。小鼠一次可采血0.2～0.3ml，大鼠一次可采血0.5～1.0ml。

(三)頸(股)靜脈或頸(股)動(dòng)脈采血：將鼠麻醉，剪去一側(cè)頸部外側(cè)被毛，作頸靜脈或頸動(dòng)脈分離手術(shù),用注射器即可抽出所需血量。大鼠多采用股靜脈或股動(dòng)脈,方法是：大鼠經(jīng)麻醉后，剪開腹股溝處皮膚，即可看到股靜脈，把此靜脈剪斷或用注射器采血即可，股動(dòng)脈較深需剝離出，再采血。

(四)摘眼球采血：此法常用于鼠類大量采血。采血時(shí),用左手固定動(dòng)物,壓迫眼球，盡量使眼球突出，右手用鑷子或*迅速摘除眼球，眼眶內(nèi)很快流出血液。

(五)斷頭采血：用剪子迅速剪掉動(dòng)物頭部，立即將動(dòng)物頸朝下，提起動(dòng)物，血液可流入已準(zhǔn)備好的容器中。